GENERALIDADES ANESTESIA AVES
Los sacos aéreos son:
-1 clavicular.
-2 cervicales.
-2 torácicos craneales.
-2 torácicos caudales.
-2 abdominales.
Los huesos son neumáticos:
§ Húmero à nunca terapia intraósea.
§ Fémur à nunca terapia intraósea.
§ Clavicular.
§ Coracoides.
§ Vértebras.
§ Esternón.
§ Costillas.
La tráquea tiene los anillos cerrados à se intuban con tubos sin manguito.
La siringe es el órgano de fonación.
No hay diafragma.
La respiración se hace por movimientos de costillas y esternón.
Elevada frecuencia cardiaca. Si sale volando, se deja descansar porque puede incrementar el estrés x2 ó x3.
PREPARACIÓN DE LA ANESTESIA
Anamnesis e historia clínica à ayuda a determinar el riesgo anestésico.
Se hacen análisis à hematocrito, WBC, proteínas totales, ácido úrico, GOT y glucosa y radiografía.
Los análisis mínimos son el hematocrito y glucosa.
El ayuno máximo es de 5-8 horas o en rapaces de 24 horas máximo, según la alimentación del animal.
En aves <100 gramos, sólo se hace una hora de ayuno porque fácilmente provoca hipoglucemia. El buche siempre debe estar vacío porque puede dar neumonía por aspiración. Puede dar neumonía crónica.
Se debe minimizar al máximo el estrés manteniéndolo en la oscuridad.
Hay gente que clasifica el riesgo en 1 sencilla: 5 difíciles de vida o muerte.
El riesgo determina el anestésico que se usará, el límite y la duración de la anestesia, terapia de soporte pre, durante y post anestesia y la técnica quirúrgica.
Siempre es importante rehidratar intraósea, intravenosa o subcutánea. Nunca se deben anestesiar animales con:
-Hematocrito >60% à animales deshidratados.
-Hematocrito <20% porque es anémico y necesita una transfusión.
La temperatura se debe mantener entre 40-41 ºC. Siempre se debe usar una fuente de calor por agua o bombillas infrarrojas.
El área quirúrgica se debe minimizar, sacando el mínimo de plumas. Como más se saca, más temperatura pierde el animal.
Para desinfectar nunca se usa el alcohol y siempre se usa clorhexidina diluida.
La hipotermia predispone a una arritmia cardiaca en incrementar el tiempo de recuperación.
PREMEDICACIÓN ANESTÉSICA
Normalmente no se usa porque se suele usar Atropina y disminuye las secreciones que disminuyen los fluidos respiratorios que darán una parada respiratoria. Además, no necesita incrementar la frecuencia respiratoria. Sólo se usa si hay bradicardia.
El glicopirrolato es la otra opción a la atropina. Es un anticolinérgico que disminuye las secreciones.
ANESTESIA INYECTABLE
La administración:
§ IM à musculatura peatonal porque es la zona más muscular. Si es de gran tamaño, en la musculatura de extremidad posterior.
§ IV à vena yugular (siempre mejor derecha), vena basílica (vena de la extremidad anterior) y vena metatarsiana medial (extremidad posterior). La mejor es la vena yugular.
ANESTÉSICOS
Principalmente ketamina.
Ketamina (100 mg / ml) + Diacepam (5 mg / ml).
Ketamina (100 mg / ml) + Xylazina (20 mg / ml) à da mucha bradicardia. Tampoco en anátidas ni rapaces.
La ketamina se usa siempre que no esté comprometido el animal. Se puede hacer una cirugía corta <40 minutos. El tiempo de recuperación es largo y da depresión muy grande. Es muy poca analgésica y no da relajación muscular. Si se da sola, después de la cirugía, se mete en un área con una toalla y trapo hasta que se despierte porque si no, se despierta de forma muy brusca y se golpea y se rompe las alas.
Ketamina (3-7 mg / Kg) + Medetomidina (75-100 mg/ Kg IM). También se puede dar 2-5 mg / Kg + 50-100 mg / Kg IV.
El midazolam sobretodo se usa en palomas como preanestésico junto a la anestesia inhalatoria en 15 mg / Kg IM.
El propofol tiene una administración lenta. Siempre se debe dar IV a 10 mg / Kg IV. Funcionan en procesos muy cortos. Se da en bolos a 0’5 mg / Kg/ minuto.
La tiletamina-Zolazepam se da a dosis de 10-30 mg / Kg. Se usa para procesos cortos de 30-40 minutos. Da hipotermia y vómitos.
ANESTESIA INHALATORIA
Es la más recomendada en aves. El índice terapéutico es mejor.
-Mejor índice terapéutico.
-Inducción y mantenimiento más controlado.
-Rápida inducción y rápida recuperación.
§ Isofluorano à sólo el 0’3% es metabolizado. No es hepatotóxico. Casi no afecta a nivel CardioRrespiratorio. Produce una mínima depresión tras la recuperación. La inducción se hace al 3-4%. Se mantiene con 1’5-2%. El flujo de oxígeno debe ser de 0’5-1 litros / minuto.
§ Halothano à no está recomendado. El 15% es metabolizado. Tiene más efectos cardiorrespiratorios (apneas y arritmias). Produce depresión durante la recuperación y tarda más en recuperarse. La inducción se hace al 2-3% y el mantenimiento al 1’5-2%.
SACO AÉREO
Indicado en cirugía de cabeza o tráquea o siringe o obstrucción de vías respiratorias.
Se accede al saco aéreo abdominal o torácico caudal. El protocolo anestésico es el mismo.
MONITORIZACIÓN
Tienen un tamaño pequeño à se debe hacer observación directa.
El control de la frecuencia cardiaca y respiratoria es difícil.
El oxipulsímetro se puede poner en el tibiotarso o propatagio (membrana que une el hombro con la articulación de la cola).
Los paños de campo se colocan adhesivos y transparentes. Se usan monitores de apnea que no valen en pájaros pequeños.
Se usa el estetoscopio, ECG, doppler y temperatura (problemas de hipotermia).
REFLEJOS
Ligera anestesia:
§ Palpebral positivo.
§ Sensibilidad positiva à pellizco o punción por aguja.
§ Tono de las alas positivo à no deja las alas abiertas.
Plano quirúrgico:
§ Palpebral negativo.
§ Corneal positivo.
§ Sensibilidad negativa.
§ Tono de las alas negativas.
Plano profundo à anestesia profunda:
§ Corneal negativo.
§ Baja frecuencia (respiratoria à puede dar parada).
CONSIDERACIONES POSTANESTÉSICAS
Ambiente tranquilo à oscuro.
Mantener la temperatura.
Oxigenoterapia si es necesaria, sobretodo en aparato respiratorio.
Terapia de soporte:
-Fluidoterapia.
-Antibióticos.
-Analgésicos.
Inicio.
 |
