REPTILES

TÉCNICAS CLÍNICAS EN REPTILES

CONTENCIÓN Y RECOLECCIÓN DE MUESTRAS

Sin importantes porque siempre habrá algún animal que no se conoce. Se puede rechazar a tratar animales ilegales. En USA, cada condado tiene sus leyes sobre animales exóticos.

Antes de tocarlo, hay que saber lo que es.

Mira en mi buscador, para poder identificar la especie. http://www.canal-h.net/webs/sgonzalez002/pagina_inici.htm o

Auma à websites sobre animales, manejos y problemas. Electronic zoo.

Frye à textos básicos.

Mader à Reptile Medicine.

No hay libros de manejo.

El tratamiento es igual básicamente en las mismas especies, con alguna excepción.

Primero hay que saber si hay que tratarlo.

CONTENCIÓN FÍSICA EN REPTILES.

Varía entre especies, grado de riesgo y temperamento. Hay que conocer las características de la especie a contener.

Sobretodo centrarnos en usar las herramientas adecuadas antes de intentar la contención:
-Seguro para el animal.

-Seguro para la persona que realiza la contención.

-Podremos lograr nuestro objetivo?

-Podremos asegurarnos de la recuperación?

Los reptiles son delicados:

§ Evitar la presión excesiva.

§ Evitar presionar el abdomen que es una musculatura muy delgada y se puede facilitar el problema interno.

§ Celomitis à no hay diafragma que separe el tórax y abdomen à básicamente peritonitis.

§ Evitar movimientos bruscos.

§ Respiración por sacos aéreos.

§ Manejo en posición natural disminuye el estrés.

§ Hay que apoyar el cuerpo entero del reptil.

§ No manejar serpientes venenosas si no se está entrenado

Los venenos de las serpientes son enzimas proteolíticas muy poderosas (salivas poderosas).

Hay que evitar el manejo directo de animales potencialmente peligrosos.

Sujetar una serpiente de la base del cuello puede causar daño permanente a las vértebras cervicales o muerte del animal.

Es peligroso por potencial de pérdida accidental de control al apoyarse.

Hay que usar mecanismos de seguridad que cubran los colmillos de animales venosos.

El manejo más seguro es con un tubo acrílico de un diámetro un poco mayor al del animal mismo. Se meten como si fuera un hoyo. El animal no debe poder voltearse en el tubo.

Puede tener ranuras que permitan examinar o inyectar.

Toda serpiente agresiva se puede mantener así porque la flora oral puede ser muy peligrosa.

Puede atravesar el tubo por completo y salir en la misma dirección o tirar de él.

Se recomienda tener el otro extremo tapado hasta que se salga.

Los lagartos y serpientes de gran talla en contenedores o cajas hechas a medida.

La cabeza puede estar cubierta con fibra natural, cinta y esparadrapo. Se minimizan los estímulos externos.

Hay que apoyar todo el cuerpo de los saurios porque el abdomen tiene muy poco músculo y los órganos internos están muy expuestos.

Para hacer una inyección IM en una tortuga à se hace en el tríceps anterior. Presenta un sistema porta renal que facilita la posibilidad de eliminación del fármaco por primer paso de riñón controvertido.

No hay que dar volúmenes superiores a 1 ml ni sustancias irritantes.

La enrofloxacina al 10% causa úlcera, necrosis y abscesos..

Para pinchar IM en serpientes, se hace sobre el músculo largo dorsal y se dan volúmenes bajos y poco irritantes.

No se debe dar más de 0’5 ml.

A lo largo, en la base se pueden dar líquidos entre el músculo largo dorsal y el músculo costal (tejido conectivo). Se puede dar hasta el 3% del peso del cuerpo para rehidratar. Son muy eficientes y eliminan muy poco agua.

SOLUCIÓN HERPETOLÓGICA

La tonicidad en reptiles es del 0’9% a 0’45% NaCl.

La tonicidad en anfibios es del 0’45% de NaCl.

Se hace una mezcla de líquidos:

-50% de solución salina isotónica.

-50% de solución dextrosa al 5% en agua.

Da como resultado 2’5% dextrosa con salinidad de 0’45%. En ranas, hay bastante con dejarlas flotar porque la piel es permeable.

INYECCIÓN INTRACELÓMICA

Entre las escamas ventrales. Hay que evitar el hígado y saco aéreo. Se hace en la parte posterior. No dan volúmenes elevados porque presiona el saco aéreo. Se inyecta en el bajo celoma para evitar los sacos aéreos.

Ausencia del diafragma.

CULTIVO DE LA CLOACA

Hisopo mojado en solución salina estéril. Se gira y se saca.

TOMA DE MUESTRAS EN SERPIENTES

Se usan vasos subcoccígeos, localizados de 3 a 5 escamas ventrales de la cloaca. Hay que tener cuidado con los dos hemipenes.

En macho la cola gruesa y larga. Se va más para atrás.

Se debe inyectar en 90º hasta topar con el aspecto ventral de las vértebras y se retrae ligeramente.

Hay que usar una jeringa heparinizada porque el EDTA lisa la sangre del reptil.

Se puede obtener hasta 20 mililitros.

Se deja que la cabeza esté más alta que la cola para que sangre más. No hay presión sanguínea y sangra lentamente.

El calibre es de 23 G y la jeringa delgada evita el colapso de los vasos por ejercer presión excesiva.

Un calibre mayor de 23 G da lisis.

SANGRADO CARDIACO

No se recomienda de forma rutinaria. Es peligroso por la alta probabilidad de rasgado ventricular.

Con la práctica y paciencia puede resultar seguro.

En las serpientes, el corazón está en el primer quinto del cuerpo.

El corazón está en el primer cuarto del cuerpo animal. La posición varía según la especie.

Reptil à 3 cámaras à igual que anfibio.

El cocodrilo tiene 4 cámaras.

La sangre oxigenada y no oxigenada se mezcla.

Tienen 2 aurículas y un ventrículo.

Los eritrocitos en reptiles y anfibios son nucleados. Las formas y los tamaños irregulares de eritrocitos son frecuentes.

Los hemoparásitos sin frecuentes pero tienen baja importancia clínica (Asociada a la inmunosupresión).

El corazón de reptil late tras morir el animal porque el músculo tiene reservas de glucógeno muy elevadas y aguanta mucha hipoxia.

No se oye a la auscultación porque no tiene válvulas.

El estenómetro permite oír pasar la sangre.

Los reptiles son fáciles de anestesiar porque resisten mucho.

EXSANGUINACIÓN CARDIACA

Se saca el máximo de sangre del animal (10% de peso por jeringa heparinizada). La boca debe estar cerrada con cinta adhesiva incluso después de muerto.

El corazón está justo delante del hígado.